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通用ELISA試劑盒開發(fā)技術(shù)

發(fā)布時(shí)間:2014-3-6 11:53:46??????瀏覽次數(shù):

廣州健侖生物科技有限公司研究所.徐華

用途原理

    ELISA(酶聯(lián)免疫吸附試驗(yàn))是一種常用的免疫檢測(cè)技術(shù),具有敏感特異、簡(jiǎn)便實(shí)用、標(biāo)準(zhǔn)穩(wěn)定等特點(diǎn),已經(jīng)成為被廣泛采用的檢測(cè)手段。然而,ELISA的工作準(zhǔn)備煩瑣而復(fù)雜,許多試劑需要臨時(shí)配置,不僅費(fèi)時(shí)費(fèi)力,而且影響結(jié)果的重復(fù)性。

    為此,我公司吸收國(guó)內(nèi)外先進(jìn)技術(shù),結(jié)合自身成熟工藝,開發(fā)出通用的即開即用ELISA試劑盒,適應(yīng)于各種抗原抗體ELISA的建立。該盒幾乎囊括了ELISA自包被到結(jié)果判斷過程中所需的各種關(guān)鍵性試劑,并已加工成工作狀態(tài),達(dá)到開盒即用的效果;同時(shí)還提供了具體詳細(xì)的操作流程和注意事項(xiàng),可以協(xié)助操作者順利完成ELISA試驗(yàn)。

    試劑盒讓ELISA操作變得簡(jiǎn)單、方便!

試劑組成

1.空白微孔板(48/96T)             1;

 

5.顯色劑TMB (4號(hào)液)              1;

2.酶結(jié)合物稀釋液(1號(hào)液)      1;

 

6.樣本稀釋液 (5號(hào)液)       1;

3.洗滌劑 (2號(hào)液)          1;

 

 

7.終止液    (6號(hào)液)      1;

4.底物(3號(hào)液)                      1

 

8.使用說明書             1;

操作程序

包被流程

1.將包被蛋白用包被液按比例稀釋,參考濃度5ug—50ug/ml不等,純度高的蛋白濃度可以低一些,反之亦然;充分稀釋后,按100ul/孔準(zhǔn)確加樣。2-818小時(shí)。

2.甩去孔中液體,用0.05M氯化鈉溶液注滿各孔,再甩去。

3.加入封閉液,充分溶解混勻。按120ul/孔加入各孔。372小時(shí),甩去后拍干即可使用。臨時(shí)保存可以放入自封袋內(nèi),密封后置于2-8℃保存。

檢測(cè)流程

1.  樣本稀釋:用樣本稀釋液(5號(hào)液)將待檢樣本按合適比例稀釋(一般間接法ELISA1100)

2.  加樣反應(yīng):每孔加已稀釋樣本100ul。同時(shí)設(shè)陰性、陽性及空白對(duì)照各一孔??瞻讓?duì)照孔 加入100ul樣本稀釋液(5號(hào)液)。37℃溫育,時(shí)間一般為30-60分鐘,甩去,每孔加洗滌液(2號(hào)液)一滴,立即用蒸餾水加滿,靜止30秒,甩去;如此洗滌五次,甩去,拍干。 

3.  加酶反應(yīng):將酶結(jié)合物用酶結(jié)合物稀釋液(1號(hào)液)按參考比例稀釋,而后按100ul/孔加入, 37℃反應(yīng)30-60分鐘。甩去,加洗滌液(2號(hào)液)一滴,立即用蒸餾水同上洗滌五次,甩去,拍干。

4.  顯色反應(yīng):加底物(3號(hào)液)和顯色劑(4號(hào)液)各一滴,混勻, 37℃下放置3-10分鐘,加終止液(6號(hào)液)一滴混勻,終止反應(yīng)。

結(jié)果判斷

1.肉眼觀察:淺于近于陰性對(duì)照為陰性; 呈明顯深于陰性對(duì)照的藍(lán)色為陽性。

2.儀器判斷:450nm讀取O.D,待檢孔O.D值大于陰性對(duì)照2.1倍者為陽性.空白對(duì)照調(diào)零。當(dāng)陰   性對(duì)照O.D值低于0.07時(shí),0.07計(jì)算。

●     問題與技巧

ELISA是一種敏感的免疫學(xué)檢測(cè)方法,容易受到各種因素的干擾。要保證實(shí)驗(yàn)的可靠性,必須注意每個(gè)環(huán)節(jié)。以下是常見的問題以及相關(guān)的解決方法:

1 包被不上抗原(抗體):

* 包被抗原應(yīng)是可溶性的,不溶性蛋白結(jié)合性能很差,比如一些重組蛋白包涵體、組蛋白、膠元旦白或脂類抗原。

解決:可以采用改變包被液PH,采用尿素溶解,改變?nèi)軇┑确椒▽⒖乖優(yōu)榭扇苄浴?/span>

* 包被抗原分子量太小,如合成多肽類。

解決:可以采用共價(jià)鍵結(jié)合模式,包被抗原。

* 包被抗原的濃度不夠。

解決:可以適當(dāng)提高包被抗原量或選取高吸附包被板,但過度包被會(huì)形成疊層,反而影響實(shí)際

結(jié)合量,甚至造成本底升高。

* 包被液PH不當(dāng)會(huì)改變蛋白質(zhì)的電荷狀況,直接影響空間結(jié)構(gòu)及抗原表位。

解決:可以測(cè)定等電點(diǎn)(PI),并系列改變PH,以尋求最適的PH值。

此外,在包被抗體時(shí),適當(dāng)預(yù)先低度變性,可以增加包被量。

 

2 本底很高

* 抗原本身不純,如有交叉表位,或有雜蛋白成分等。

解決:雜蛋白可以通過鹽析、層析純化去除;而交叉表位處理較為復(fù)雜,需要在表位選擇時(shí)認(rèn)真考慮。

* 包被板封閉不佳,在包被板上留有較多的空白。

解決:提高封閉劑濃度,選擇更有效的封閉蛋白。

* 樣本問題,首先是稀釋不夠:間接法ELISA一般要求血清稀釋在150以上,其它體液可以濃度大一些;

解決:系列稀釋樣本,以選擇最佳比例。

* 其次,樣本高脂、高色素、溶血以及污染長(zhǎng)菌,都有可能造成本底上升;

解決:要采用新鮮無溶血標(biāo)本,低溫凍存。

* 最后可能與樣本稀釋液有關(guān),樣本稀釋液的PH、離子強(qiáng)度等都會(huì)影響非特異性結(jié)合;

解決:可以采用可靠的樣本稀釋液或自行調(diào)整PH、緩沖系等條件。

* 酶濃度過高,造成非特異性上升;

解決:應(yīng)當(dāng)選擇恰當(dāng)酶濃度。

 

3 反應(yīng)強(qiáng)度不夠

* 除與抗原活性、包被效果相關(guān)外,主要受酶結(jié)合物性質(zhì)和濃度的影響。一般,稀釋后的酶結(jié)合物失活很快,半衰期僅3天。

解決:采用本試劑盒的酶稀釋液可以有效保護(hù)酶活性,大大延長(zhǎng)酶反應(yīng)能力。此外,采用高純度的二抗(有親和層析的單克隆抗體酶最佳)。

延長(zhǎng)反應(yīng)時(shí)間也可以一定程度提高反應(yīng)強(qiáng)度。

 

4 顯色問題

* 全部白板。原因與漏加酶液,酶液失活,顯色體系失效等。

  解決:可以取確認(rèn)正常的酶液20ul,直接滴加底物和顯色劑各一滴,觀察顯色情況。正常應(yīng)在60秒鐘出現(xiàn)明顯蘭色,否則,應(yīng)認(rèn)為顯色體系有問題,需要更換。

* 肉眼觀察顏色很深,酶標(biāo)儀讀數(shù)卻很低。如儀器工作正常,往往是選擇的波長(zhǎng)不匹配。

解決TMB顯色劑被硫酸終止后,呈黃色,應(yīng)在450NM處測(cè)定(注意:另外一種顯色劑OPD則在492NM測(cè)定)。

* 定量測(cè)定抗原或抗體時(shí),線性范圍窄。

  解決ELISA的反應(yīng)在O.D0.2-1.0區(qū)間較為穩(wěn)定,超出以后,系統(tǒng)誤差加大,變得不太穩(wěn)定??梢栽谡{(diào)整反應(yīng)到此區(qū)間。

 

5 操作過程中的其它問題與解決,見附表:

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